Atelier Phylogénomique Arbre espèces

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Revision as of 16:47, 19 October 2021

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Introduction

Support de cours : supports

Nous allons utiliser un sous ensemble de gènes concervés chez Prochlorococcus et Synechococcus pour expérimenter les différentes méthodes de reconstruction phylogénomiques. Nous nous initierons à la comparaison d’arbres.

Extraction des séquences nucléotidiques des gènes orthologues

Créer un fichier avec toutes les séquences nucléotidiques (cds):

Si le répertoire n'existe pas déjà, le créer.

mkdir -p ~/work/ProchlorococcusSynechococcus/DNA
cat ~/work/Prochlorococcus/prokka/Aaa*/Aaa*.ffn ~/work/Synechococcus/prokka/Aaa*/Aaa*.ffn > ~/work/ProchlorococcusSynechococcus/DNA/combined_dna.ffn

grep -c '>' ~/work/ProchlorococcusSynechococcus/DNA/combined_dna.ffn

Extraire les groupes de gènes orthologues

Exemple de la création d'un script et lancement du job avec sbatch

mkdir -p ~/work/ProchlorococcusSynechococcus/OG/DNA

Créer le fichier suivant commande.sh.

#!/usr/bin/bash
~/work/scripts/extract_sequences_from_matchtable.pl --fasta ~/work/ProchlorococcusSynechococcus/DNA/combined_dna.ffn --matchtable ~/work/ProchlorococcusSynechococcus/panoct/results/matchtable.txt --outdir ~/work/ProchlorococcusSynechococcus/OG/DNA --quorum 16

sbatch commande.sh

Vérifier que les fichiers contiennent au moins 16 séquences:

grep -c '>' ~/work/ProchlorococcusSynechococcus/OG/DNA/*fas

Question 5.1:
A quoi correspond ce quorum. Pourquoi utiliser un seuil de 16? 
Combien de fichiers avez-vous obtenus?
Est-ce pertinent dans les situations où vous avez un grand nombre de souches?
Et quand les espèces étudiées sont très éloignées phylogénétiquement parlant ?

Transformation en alignement multiples des séquences ADN des gènes

Le script aa_to_dna_aln.pl prend en entrée un fichier fasta contenant des séquences d'ADN. Il traduit des séquences, réalise un alignement multiple avec muscle et retraduit en ADN cet alignement multiple (BioPerl).

mkdir ~/work/ProchlorococcusSynechococcus/OG/alignment

Attention à faire un script et le lancer en sbatch ou en srun --pty bash

 ~/work/scripts/aa_to_dna_aln.pl -dna ~/work/ProchlorococcusSynechococcus/OG/DNA/OG_1471.fas --outdir ~/work/ProchlorococcusSynechococcus/OG/alignment

La traduction en peptides ajoute un '*' à la fin des séquences. Vous pouvez ignorer le message:

*** WARNING *** Invalid character '*' in FASTA sequence data, ignored

En sortie:

pep_OG_1471.fas       peptides
ali_pep_OG_1471.fas   alignement des peptides
ali_dna_OG_1471.fas   alignement des nucléotides

Le programme suivant réalise le traitement pour un sous ensemble de sample fichiers tirés au hasard.

Il soumet sur le cluster donc, merci de vous remettre sur genologin pour lancer la commande ci-dessous.

Pour monitorer vos jobs : squeue -u $USER

~/work/scripts/aa_to_dna_aln_loop.pl --directory ~/work/ProchlorococcusSynechococcus/OG/DNA --outdir ~/work/ProchlorococcusSynechococcus/OG/alignment --sample 100

Comptez les nombre d'alignements obtenus.

Question 5.2:
Quelle est la raison de passer par un alignement des peptides pour obtenir l'alignement en nucléotides?
Pour quelle raison allons nous travailler sur un sous ensemble d'alignements? 
Est-il pertinent de réaliser un échantillonnage des alignements par tirage aléatoire? Quelles autres approches pouvez-vous envisager?
Serait-il pertinent de réaliser plusieurs tirages? Quel usage pourriez-vous en faire?

Construction des arbres des groupes de gènes orthologues

MSK

Evaluation des alignements avec t_coffee

for i in ~/work/ProchlorococcusSynechococcus/OG/alignment/ali_dna_OG_*.fas 
do 
  ip=$(basename $i .aln)     
  outfile="~/work/ProchlorococcusSynechococcus/OG/alignment/"$ip".ali"
  echo "module load  bioinfo/T-COFFEE_11.00.8cbe486; t_coffee -infile $i -output score_ascii, aln, score_html -outfile $outfile;" 
done > OG_t_coffee_TCS.sh

sarray -J mkdb -o %j.out -e %j.err -t 01:00:00 --cpus-per-task=1 OG_t_coffee_TCS.sh
squeue -l -u $USER

Sélection alignements avec un SCORE=1000.

for i in ~/work/ProchlorococcusSynechococcus/OG/alignment/*.ali; 
do 
 ip=$(basename $i .aln)     
 grep -H 'SCORE=1000' $i
done

Edition des alignements avec trimal

MSK

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